2.43
1.65
1.98
0.73
1.88
1.81
2.43
2.2 Normaj substancoj uzataj en la kalibrada kurbo de relativa molekula maso-distribuo: insulino, mikopeptidoj, glicino-glicino-tirozino-arginino, glicino-glicino-glicino
3 Instrumento kaj ekipaĵo
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20.8
23.9
27.5
Ĝenerale, la proporcio de aminoacidoj en la produktoj de Sustar estas pli alta ol tiu en la produktoj de Zinpro.
Parto 8 Efikoj de uzo
Efikoj de diversaj fontoj de spurmineraloj sur la produktadrendimento kaj ovkvalito de ovontaj kokinoj en la malfrua ovontada periodo
Produktada Procezo
Celita kelatiĝa teknologio
Tonda emulsiiga teknologio
Prema ŝprucado kaj sekigteknologio
Fridigo kaj senhumidiga teknologio
Altnivela media kontrola teknologio
Apendico A: Metodoj por la determinado de relativa molekula maso-distribuo de peptidoj
Adopto de normo: GB/T 22492-2008
1 Testprincipo:
Ĝi estis determinita per alt-efikeca ĝel-filtra kromatografio. Tio estas, uzante poran plenigaĵon kiel senmovan fazon, surbaze de la diferenco en la relativa molekula maso de la specimenaj komponantoj por apartigo, detektita ĉe la peptida ligo kun ultraviola sorba ondolongo de 220 nm, uzante dediĉitan datenprilaboran programaron por determini la relativan molekulan masdistribuon per ĝel-filtra kromatografio (t.e., la GPC-programaro), la kromatogramoj kaj iliaj datumoj estis prilaboritaj, kalkulitaj por akiri la grandecon de la relativa molekula maso de la sojfaba peptido kaj la distribuan gamon.
2. Reakciaĵoj
La eksperimenta akvo devas plenumi la specifon de sekundara akvo en GB/T6682, la uzo de reakciaĵoj, krom specialaj provizaĵoj, devas esti analize pura.
2.1 Reakciaĵoj inkluzivas acetonitrilon (kromatografie puran), trifluoroacetan acidon (kromatografie puran),
2.2 Normaj substancoj uzataj en la kalibrada kurbo de relativa molekula maso-distribuo: insulino, mikopeptidoj, glicino-glicino-tirozino-arginino, glicino-glicino-glicino
3 Instrumento kaj ekipaĵo
3.1 Alt-Efikeca Likva Kromatografo (HPLC): kromatografia laborstacio aŭ integrilo kun UV-detektilo kaj GPC-datenprilabora programaro.
3.2 Mobilfaza vakua filtrado kaj degasigo.
3.3 Elektronika pesilo: gradigita valoro 0,000 1g.
4 Funkciigadoj
4.1 Kromatografiaj kondiĉoj kaj sistemaj adaptiĝaj eksperimentoj (referencaj kondiĉoj)
- 4.1.1 Kromatografia kolumno: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (interna diametro) aŭ aliaj ĝelkolumnoj de la sama tipo kun simila funkciado taŭgaj por la determinado de proteinoj kaj peptidoj.
- 4.1.2 Mova fazo: Acetonitrilo + akvo + trifluoroacetata acido = 20 + 80 + 0,1.
- 4.1.3 Detekta ondolongo: 220 nm.
- 4.1.4 Flukvanto: 0,5 mL/min.
- 4.1.5 Detektotempo: 30 minutoj.
- 4.1.6 Specimena injekta volumeno: 20 μL.
- 4.1.7 Kolona temperaturo: ĉambra temperaturo.
- 4.1.8 Por ke la kromatografia sistemo plenumu la detektajn postulojn, oni kondiĉis, ke sub la supre menciitaj kromatografiaj kondiĉoj, la efikeco de la ĝela kromatografia kolumno, t.e., la teoria nombro da platoj (N), ne estu malpli ol 10000 kalkulita surbaze de la pintoj de la tripeptida normo (Glicino-Glicino-Glicino).
- 4.2 Produktado de relativaj molekulaj maso-normaj kurboj
- La supre menciitaj peptidaj normaj solvaĵoj kun malsamaj relativaj molekulaj masoj kaj masa koncentriĝo de 1 mg/mL estis preparitaj per mobilfaza akordigo, miksitaj en certa proporcio, kaj poste filtritaj tra organika faza membrano kun porgrandeco de 0.2 μm~0.5 μm kaj injektitaj en la specimenon, kaj poste la kromatogramoj de la normoj estis akiritaj. Kalibraj kurboj de relativa molekula maso kaj iliaj ekvacioj estis akiritaj per desegnado de la logaritmo de relativa molekula maso kontraŭ retentempo aŭ per lineara regreso.
4.3 Specimena traktado
Precize pezu 10mg da specimeno en 10mL-a mezurflasko, aldonu iom da movebla fazo, ultrasonan skuadon dum 10 minutoj, tiel ke la specimeno estas plene dissolvita kaj miksita, diluita kun movebla fazo ĝis la skalo, kaj poste filtrita tra organika faza membrano kun porgrandeco de 0.2μm~0.5μm, kaj la filtraĵo estas analizita laŭ la kromatografiaj kondiĉoj en A.4.1.
- 5. Kalkulo de relativa molekula maso-distribuo
- Post analizo de la specimena solvaĵo preparita en 4.3 sub la kromatografiaj kondiĉoj de 4.1, la relativa molekula maso de la specimeno kaj ĝia distribua intervalo povas esti akiritaj per anstataŭigo de la kromatografiaj datumoj de la specimeno en la kalibran kurbon 4.2 per GPC-datenprilabora programaro. La distribuo de la relativaj molekulaj masoj de la malsamaj peptidoj povas esti kalkulita per la metodo de normaligo de pintareo, laŭ la formulo: X = A/A sume × 100
- En la formulo: X - La masa frakcio de relativa molekula maso de peptido en la tuta peptido en la specimeno, %;
- A - Pinta areo de relativa molekula maso peptido;
- Totala A - la sumo de la pintaj areoj de ĉiu relativa molekula maso peptido, kalkulita ĝis unu decimala pozicio.
- 6 Ripeteblo
- La absoluta diferenco inter du sendependaj determinoj akiritaj sub kondiĉoj de ripeteblo ne devas superi 15% de la aritmetika meznombro de la du determinoj.
- Apendico B: Metodoj por la Determino de Liberaj Aminoacidoj
- Adopto de normo: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 Reakciaĵoj kaj materialoj
- Glacieja acetata acido: analize pura
- Perklora acido: 0,0500 mol/L
- Indikilo: 0,1% kristalviola indikilo (glacieja acetata acido)
- 2. Determino de liberaj aminoacidoj
La specimenoj estis sekigitaj je 80 °C dum 1 horo.
Metu la specimenon en sekan ujon por malvarmiĝi nature ĝis ĉambra temperaturo aŭ ĝis uzebla temperaturo.Pezu proksimume 0,1 g da specimeno (precize ĝis 0,001 g) en 250 mL sekan konusan flakonon.Rapide daŭrigu al la sekva paŝo por eviti ke la specimeno absorbu ĉirkaŭan humidonAldonu 25 mL da glacieja acetata acido kaj bone miksu dum ne pli ol 5 minutoj.Aldonu 2 gutojn da kristalviola indikiloTitru per 0,0500 mol/L (±0,001) norma titrada solvaĵo de perklora acido ĝis la solvaĵo ŝanĝiĝas de viola al la fina punkto.
Registru la konsumitan volumenon de norma solvaĵo.
- Samtempe faru la malplenan teston.
- 3. Kalkulo kaj rezultoj
- La enhavo de liberaj aminoacidoj X en la reakciilo estas esprimita kiel masa frakcio (%) kaj estas kalkulata laŭ la formulo: X = C × (V1-V0) × 0,1445/M × 100%, en la formulo:
- C - Koncentriĝo de norma perklora acida solvaĵo en moloj por litro (mol/L)
- V1 - Volumeno uzata por titrado de specimenoj kun norma perkloracida solvaĵo, en mililitroj (mL).
- Vo - Volumeno uzata por titrada blankaĵo kun norma perkloracida solvaĵo, en mililitroj (mL);
M - Maso de la specimeno, en gramoj (g).
| 0,1445: Meza maso de aminoacidoj ekvivalentaj al 1,00 mL de norma perkloracida solvaĵo [c(HClO4) = 1,000 mol/L]. | 4.2.3 Norma titrada solvaĵo de ceria sulfato: koncentriĝo c [Ce(SO4)2] = 0,1 mol/L, preparita laŭ GB/T601. | |
| Adopto de normoj: Q/70920556 71-2024 | 1. Determina principo (Fe kiel ekzemplo) | Aminoacidaj ferkompleksoj havas tre malaltan solveblecon en anhidra etanolo kaj liberaj metaljonoj estas solveblaj en anhidra etanolo, la diferenco en solvebleco inter la du en anhidra etanolo estis utiligita por determini la kelatiĝrapidecon de aminoacidaj ferkompleksoj. |
| En la formulo: V1 - volumeno de ceria sulfata norma solvaĵo konsumita por titrado de testa solvaĵo, mL; | Senakva etanolo; la resto estas sama kiel en paragrafo 4.5.2 en GB/T 27983-2011. | 3. Paŝoj de analizo |
| Faru du provojn paralele. Pezu 0.1g de la specimeno sekigita je 103±2℃ dum 1 horo, precize ĝis 0.0001g, aldonu 100mL da anhidra etanolo por dissolvi, filtru, lavu la restaĵon per 100mL da anhidra etanolo almenaŭ tri fojojn, poste transverŝu la restaĵon en 250mL konusan flakonon, aldonu 10mL da sulfatacida solvaĵo laŭ paragrafo 4.5.3 en GB/T27983-2011, kaj poste plenumu la jenajn paŝojn laŭ paragrafo 4.5.3 "Varmu por dissolvi kaj poste lasu malvarmiĝi" en GB/T27983-2011. Samtempe plenumu la blankan teston. | 4. Determino de la totala ferenhavo | 4.1 La principo de determinado estas la sama kiel en paragrafo 4.4.1 en GB/T 21996-2008. |
4.2. Reakciaĵoj kaj Solvaĵoj
| 4.2.1 Miksita acido: Aldonu 150 ml da sulfata acido kaj 150 ml da fosfora acido al 700 ml da akvo kaj bone miksu. | 4.2.2 Indikila solvaĵo de natria difenilamina sulfonato: 5g/L, preparita laŭ GB/T603. | 4.2.3 Norma titrada solvaĵo de ceria sulfato: koncentriĝo c [Ce(SO4)2] = 0,1 mol/L, preparita laŭ GB/T601. | |
| 4.3 Paŝoj de analizo | Faru du provojn paralele. Pezu 0.1g da specimeno, precize ĝis 0.20001g, metu ĝin en 250ml konusan flakonon, aldonu 10ml da miksita acido, post dissolvo, aldonu 30ml da akvo kaj 4 gutojn da natria dianilina sulfonata indikila solvaĵo, kaj poste plenumu la jenajn paŝojn laŭ paragrafo 4.4.2 en GB/T21996-2008. Samtempe plenumu la blankan teston. | 4.4 Prezentado de rezultoj | La totala ferenhavo X1 de la aminoacidaj ferkompleksoj laŭ la masa frakcio de fero, la valoro esprimita en %, estis kalkulita laŭ formulo (1): |
| X1=(V-V0)×C×M×10⁻³×10⁻³ | V0 - norma solvaĵo de ceria sulfato konsumita por titrado de blanka solvaĵo, mL; | V0 - norma solvaĵo de ceria sulfato konsumita por titrado de blanka solvaĵo, mL; | C - Fakta koncentriĝo de ceria sulfata norma solvaĵo, mol/L5. Kalkulo de fera enhavo en kelatojLa ferenhavo X2 en la kelato laŭ la masa frakcio de fero, la valoro esprimita en %, estis kalkulita laŭ la formulo: x2 = ((V1-V2) × C × 0,05585)/m1 × 100 |
| En la formulo: V1 - volumeno de ceria sulfata norma solvaĵo konsumita por titrado de testa solvaĵo, mL; | V2 - norma solvaĵo de ceria sulfato konsumita por titrado de blanka solvaĵo, mL;nom1-Maso de la specimeno, g. Prenu la aritmetikan meznombron de la rezultoj de paralela determinado kiel la rezultojn de determinado, kaj la absoluta diferenco de la rezultoj de paralela determinado ne estas pli ol 0,3%. | 0,05585 - maso de fera fero esprimita en gramoj ekvivalenta al 1,00 mL de ceria sulfata norma solvaĵo C[Ce(SO4)2.4H20] = 1,000 mol/L.nom1-Maso de la specimeno, g. Prenu la aritmetikan meznombron de la rezultoj de paralela determinado kiel la rezultojn de determinado, kaj la absoluta diferenco de la rezultoj de paralela determinado ne estas pli ol 0,3%. | 6. Kalkulo de kelaciĝa indicoKelatiĝa indico X3, la valoro esprimita en %, X3 = X2/X1 × 100Apendico C: Metodoj por la Determino de la kelatiga indico de Zinpro |
Adopto de normo: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reakciaĵoj kaj materialoj
a) Glacieja acetata acido: analize pura; b) Perklora acido: 0,0500 mol/L; c) Indikilo: 0,1% kristalviola indikilo (glacieja acetata acido)
2. Determino de liberaj aminoacidoj
2.1 La specimenoj estis sekigitaj je 80 °C dum 1 horo.
2.2 Metu la specimenon en sekan ujon por ke ĝi malvarmiĝu nature ĝis ĉambra temperaturo aŭ ĝis uzebla temperaturo.
2.3 Pezu proksimume 0,1 g da specimeno (precize ĝis 0,001 g) en 250 mL sekan konusan flakonon
2.4 Rapide daŭrigu al la sekva paŝo por eviti ke la specimeno absorbu ĉirkaŭan humidon.
2.5 Aldonu 25 ml da glacia acetata acido kaj bone miksu dum ne pli ol 5 minutoj.
2.6 Aldonu 2 gutojn da kristalviola indikilo.
2.7 Titru per 0,0500 mol/L (±0,001) norma titrada solvaĵo de perklora acido ĝis la solvaĵo ŝanĝiĝas de viola al verda dum 15 sekundoj sen ŝanĝi koloron kiel la finpunkto.
2.8 Registru la konsumitan volumenon de norma solvaĵo.
2.9 Samtempe faru la malplenan teston.
- 3. Kalkulo kaj rezultoj
- Kataluna
- Physicochemical parameters
V1 - Volumeno uzata por titrado de specimenoj kun norma perkloracida solvaĵo, en mililitroj (mL).
Vo - Volumeno uzata por titrada blankaĵo kun norma perkloracida solvaĵo, en mililitroj (mL);
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Adreso: Qingpu-vojo n-ro 147, urbeto Shouan, distrikto Pujiang, urbo Chengdu, provinco Siĉuano, Ĉinio
Telefono: 86-18880477902
Produktoj
Neorganikaj spurmineraloj
- Organikaj spurmineraloj
- Svahila
- Personigita servo
- Rapidaj ligiloj
Firmaa Profilo
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Guĝarata | Alklaku por enketo | © Kopirajto - 2010-2025 : Ĉiuj Rajtoj Rezervitaj. | Mapo de la retejo Plej ŝatataj serĉoj Telefono |
| Telefono | 86-18880477902 | Java | Retpoŝto |
| 8618880477902 | Ĉina | Franca | |
| Bird | Ĉina | Franca | Germana Hispana |
| Aquatic animals | Japana | Korea | Araba Greka |
| Turka | Itala | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | Indonezia Afrikansa lingvo Sveda |
Pola
- la eŭska
- Kataluna
- Physicochemical parameters
Hinda
Lao
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Ŝona
Bulgara
- Cebuano
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- Kroata
Nederlanda
| Application object | la urdua Vjetnama | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Guĝarata | Haitiana | Haŭsa | Kinjarvanda Hmong Hungara |
| Piglets and fattening pigs | Igbo | Java | Kannada Ĥmeroj Kurda |
| Kirgizoj | la latina | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | Makedona Malaja Malajala |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
Norvega
- Paŝto
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
Serba
Sesoto
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Ŝona
Sindhi
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
Svahila
Taĝika
Tamila
La telugua
Tajlanda
| Application object | la urdua Vjetnama | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Jida lingvo | Joruba | Zulua | Kinjarvanda Oriya Turkmena |
| Ujguro | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1.52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
